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更新時(shí)間:2018-01-23
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1. 溶液I
50mmol/L葡萄糖
25mmol/L Tris.Cl(pH8.0)
10mmol/LEDTA(pH8.0)
溶液I可成批配制,每瓶約100ml,在6.895×104Pa高壓下蒸氣滅菌15分鐘,貯存于4℃。
2. 溶液Ⅱ
0.2mol/L NaOH(臨用前用10mol/L貯存液現(xiàn)用現(xiàn)稀釋)
1%SDS
3. 溶液Ⅲ
5mol/L乙酸鉀 60ml
冰乙酸 11.5ml
水 28.5ml
所配成的溶液對(duì)鉀是3mol/L,對(duì)乙酸根是5mol/L。
4. STET
0.1mol/L NaCL
10mmol/L Tris.Cl(pH8.0)
1mmol/L EDTA(pH8.0)
5% Triton X-100
5. *溶液
10mg/ml,用10mmol/L Tris.Cl(pH8.0)配制。
1. 細(xì)菌的收獲
1) 將2ml含相應(yīng)抗生素的LB加入到容量為15ml 并通氣良好(不蓋緊)的試管中,然后接入一單菌落,于30℃劇烈振搖下培養(yǎng)過(guò)夜。
2) 將1.5ml培養(yǎng)物倒入微量離心管中,用微量離心機(jī)于4℃以12000g離心30秒,將剩余的培養(yǎng)物貯存于4℃。
3) 吸去培養(yǎng)液,使細(xì)菌沉淀盡可能干燥。除去上清的簡(jiǎn)便方法是用一次性使用的吸頭與真空管道相連,輕緩抽吸,并用吸頭接觸液面。當(dāng)液體從管中吸出時(shí),盡可能使吸頭遠(yuǎn)離細(xì)菌沉淀,然后繼續(xù)用吸頭通過(guò)抽真空除去附于管壁的液滴。
2. 堿裂解法
1) 將細(xì)菌沉淀,所得重懸于100μl用冰預(yù)冷的溶液I中,劇烈振蕩。須確使細(xì)菌沉淀在溶液I中*分散,將兩個(gè)微量離心管的管底部互相接觸震蕩,可使沉淀迅速分散。
2) 加200μl新配制的溶液Ⅱ。蓋緊管口,快速顛倒離心管5次,以混合內(nèi)容物。應(yīng)確保離心管的整個(gè)內(nèi)表面均與溶液Ⅱ接觸。不要振蕩,將離心管放置于冰上。
3) 加150μl用冰預(yù)冷的溶液Ⅲ,蓋緊管口,將管倒置后和地振蕩10秒鐘溶液Ⅲ在粘稠的細(xì)菌裂解物中分散均勻,之后將管置于冰上3-5分鐘。
4) 用微量離心機(jī)于4℃12 000g離心5分種,將上清轉(zhuǎn)移到另一離心管中。
5) 可做可不做:加等量酚:,振蕩混勻,用微量離心機(jī)于4 ℃以12000g離心2分鐘,將上清轉(zhuǎn)移到另一良心管中。有些工作者認(rèn)為不*酚:進(jìn)行抽提,然而由于一些未知的原因,省略這一步,往往會(huì)得到可耐受限制酶切反應(yīng)的DNA。
6) 用2倍休積的乙醇于室溫沉淀雙鏈DNA。振蕩混合,于室溫放置2分鐘。
7) 用微量離心機(jī)于4℃以12 000g離心5分鐘。
8) 小心吸去上清液,將離心管倒置于一張紙巾上,以使所有液體流出。再將附于管壁的液滴除盡。除去上清的簡(jiǎn)便方法是用一次性使用的吸頭與真空管道相連,并用吸頭接觸液面。當(dāng)液體從管中吸出時(shí),盡量使吸頭遠(yuǎn)離核酸沉淀,然后繼續(xù)用吸頭通過(guò)抽真空除去附于管壁的液滴。
9) 用1ml70%乙醇于4℃洗滌雙鏈DNA沉淀,按步驟H所術(shù)方法去掉上清,在空氣中使核酸沉淀干燥10分鐘。
注:
1. 此法制備的高拷貝數(shù)質(zhì)粒(如Xf3或pUC),其產(chǎn)量一般約為:每毫升原細(xì)菌培養(yǎng)物3-5μg。
2.如果要通過(guò)限制酶切割反應(yīng)來(lái)分析DNA,可取1μl DNA溶液加到另一含8μl水的微量離心管內(nèi),加1μl 10×限制酶緩沖液和1單位所需限制酶,在適宜溫育1-2小時(shí)。將剩余的DNA貯存于-20℃。
3. 此方法按適當(dāng)比例放大可適用于100ml細(xì)菌培養(yǎng)物:
3. 煮沸裂解
1) 將細(xì)菌沉淀,所得重懸于350μlSTET中。
2) 加25μl新配制的*溶液,振蕩3秒鐘以混勻之。如果溶淮中pH低于8.0,*就不能有效發(fā)揮作用。
3) 將離心管放入煮沸的水浴中,時(shí)間恰為40秒。
4) 用微量離心機(jī)于室溫以12 000g離心10分種。
5) 用無(wú)菌牙簽從微量離心管中去除細(xì)菌碎片。
6) 在上清中加入40μl 5mol/L乙酸鈉(pH5.2)和420μl異丙醇,振蕩混勻,于室溫放置5分鐘。
7) 用微量離心機(jī)于4℃以12 000g離心5分種,回收核酸沉淀。
8) 小心吸去上清液,將離心管倒置于一張紙巾上,以使所有液體流出。再將附于管壁的液滴除盡。除去上清的簡(jiǎn)便方法是用一次性使用的吸頭與真空管道相連,輕緩抽吸,并用吸頭接觸液面。當(dāng)液體從管中吸出時(shí),盡可能使吸頭遠(yuǎn)離核酸沉淀,然后繼續(xù)用吸頭通過(guò)抽真空除去附于管的液滴。
9) 加1ml 70%乙醇,于4℃以12 000g離心2分鐘。
10) 按步驟H所述再次輕輕地吸去上清,這一步操作要格外小心,因?yàn)橛袝r(shí)沉淀塊貼壁不緊,去除管壁上形成的所有乙醇液滴,打開(kāi)管口,放于室溫直至乙醇揮發(fā)殆盡,管內(nèi)無(wú)可見(jiàn)的液體(2-5)分鐘。
11) 用50μl含無(wú)DNA酶的胰RNA酶(20μg/ml)的TE(pH8.0)溶解核酸稍加振蕩,貯存于-20℃。
注:當(dāng)從表達(dá)內(nèi)切核酸酶A的大腸桿菌株(endA 株,如HB101 )中小量制粒尤其DNA時(shí),建議舍棄煮沸法。因?yàn)橹蠓胁襟E不能*滅活內(nèi)切核酸酶A,以后在Mg2 存在下溫育(V中用限制酶時(shí))質(zhì)粒DNA可被降解。在上述方案的步驟I之間增加一步,即用酚:進(jìn)行抽提,可以避免這一問(wèn)題。
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